神经元细胞超微结构的形态学分析

神经元细胞超微结构的形态学分析

直接在的塑料培养皿中进行制样和聚合, 其细胞结构保持较好, 但由于塑料材质的培养皿不能使用环氧丙烷和丙酮这些有机溶剂, 置换过程不彻底, 因而造成细胞整体衬度较弱和胞内膜性结构的细胞器模糊。研究发现, 培养在Thermanox塑料薄膜盖玻片上的神经元细胞获得量较大, 树脂渗透性好, 原位性强且超微结构清晰, 切片状态较好, 单层细胞本身为一层薄薄的细胞, 厚度在10~20 μm, 容易被渗透。细胞样品制备过程中每个环节的时间可适当缩短, 试剂换洗过程需要快速, 从而避免细胞表面失水变形。我们推测, 塑料盖玻片法在整个实验过程中没有对细胞进行物理转移, Thermanox盖玻片本身对有机溶剂具有抗性, 在制样过程中可以使用环氧丙烷等有机溶剂, 便于置换彻底, 有利于结构的保存。

我们可以将原位包埋技术与光电联用技术相融合, 利用荧光显微镜的分子标记功能, 结合电子显微镜捕获高分辨率超微结构的能力, 在神经元细胞结构与功能研究方面搭建一座桥梁。此外, 我们利用实验室原有的纳米尺度自动条带式超薄连续切片收集装置对单层细胞样品进行连续的收集, 可重构单层神经元的超微细胞结构, 能够更全面地了解神经元细胞的连接和分布规律。

培养在玻璃盖片上的神经元细胞结构并不理想, 与氢氟酸溶解玻璃盖片有关, 氢氟酸在溶解盖玻片时对zui外层树脂造成损坏, 间接影响到神经元细胞的结构。光镜电镜联用技术和连续切片三维重构技术是近年来电镜技术领域较为热门的技术, 这两项技术zui先应用于单层贴壁细胞, 保持细胞的原位性对于光电联用和三维重构是关键。

在以往的原位包埋制样方法中, 实验者通常采用的是倒扣法, 在树脂层与培养介质分离过程中容易对细胞造成物理损伤, 常发生断裂不彻底, 成功率低, 原位效果较差。有学者认为, 其主要原因是爬片材料与树脂的黏附程度不同所致。

人脑微血管内皮细胞 英文名称： HBMEC 规格: 5 x 10^5 cells/vial

人脑血管平滑肌细胞 英文名称： HBVSMC 规格: 5 x 10^5 cells/vial

人脑血管外膜成纤维细胞 英文名称： HBVSMC 规格: 5 x 10^5 cells/vial

人脑血管周细胞 英文名称： HBVP 规格: 5 x 10^5 cells/vial

人脉络丛内皮细胞 英文名称： HCPEC 规格: 5 x 10^5 cells/vial

人脉络丛上皮细胞 英文名称： HCPEpiC 规格: 5 x 10^5 cells/vial

人脉络丛成纤维细胞 英文名称： HCPF 规格: 5 x 10^5 cells/vial

人脑膜细胞 英文名称： HMC 规格: 5 x 10^5 cells/vial

人神经细胞 英文名称： HM 规格: 1 x 10^6 cells/vial

人神经细胞 英文名称： HN 规格: 5 x 10^6 cells/vial

人神经细胞 英文名称： HN 规格: 10 x 10^6 cells/vial

人小脑颗粒细胞 英文名称： HCGC 规格: 1 x 10^6 cells/vial

人海马趾神经细胞 英文名称： HN-h 规格: 1 x 10^6 cells/vial

人少突胶质前体细胞-贴壁生长 英文名称： HOPC 规格: 1 x 10^6 cells/vial

人少突胶质前体细胞-悬浮生长 英文名称： HOPC-os 规格: 5 x 10^6 cells/vial